鉴定2型先天性淋巴细胞的设门策略
鉴定2型先天性淋巴细胞的设门策略
- Document # 27030
- Version 2.1.0
- 8/28/20
背景介绍
2010年开始的研究中,几个研究小组鉴定出少数具有淋巴细胞特征但缺乏谱系标记(Lin-)和重新排列的抗原特异性细胞表面受体的免疫细胞1,2。这些细胞分别以不同的名称来指代,例如自然辅助细胞3,4,nuocytes5,先天性淋巴细胞6和二型先天辅助细胞7。2013年提出了统一的命名法,将这些细胞分类为II型先天性淋巴细胞(ILC2)8。 ILC2是ILC家族较大的一部分,根据这一新的命名方法,于是将ILC分为了三大类:1型ILC(ILC1s),2型ILC(ILC2s)和3型ILC(ILC3s)8。这些分类是基于转录因子表达,表面受体和细胞因子分泌谱,它们分别反映了T辅助细胞亚群Th1,Th2和Th17的谱。因此,ILC2s产生与Th2相关的细胞因子,包括白介素(IL)-4,IL-5,IL-9和IL-13,并参与2型免疫应答(图1)。通过表面染色,人ILC2s对谱系标记物呈阴性,而对CD45,CD294,CD127和CD161呈阳性。小鼠ILC2s的谱系标记物为阴性,而CD45,ICOS和ST2的阳性(处于不同水平)。自从它们最初被鉴定以来,我们现在知道ILC2s是涉及先天免疫的重要效应细胞,并且是抗蠕虫免疫,过敏性炎症和组织修复所必需的1。有关不同ILC亚群(包括ILC2s)的发育,生物学和功能的更多信息,请参见相关文献1,2,9,10。
图1. 2型先天性淋巴样细胞(ILC2s)
ILC2s对多种刺激作出反应,包括存活细胞因子(Survival cytokines,例如IL-2,IL-7和IL-9)和警报蛋白(Alarmins, 例如IL-33,IL-25和TSLP)。 然后ILC2s产生2型细胞因子,包括IL-4,IL-5,IL-9和IL-13,从而促进巨噬细胞(Macrophage),B细胞,CD4+ T细胞,嗜碱性粒细胞(Basophils),嗜酸性粒细胞(Eosinophil),肥大细胞(Mast Cell),树突状细胞(Dendritic)和上皮细胞(Epithelial Cells)的活化 。 GM-CSF,粒细胞巨噬细胞集落刺激因子; IFNγ,干扰素-γ; IL,白介素; TSLP,胸腺基质淋巴细胞生成素。
挑战
ILC2s在人体中广泛分布。它们主要在皮肤,肠和肺等屏障表面表达丰富,也存在于脂肪组织和外周血中1。尽管在不同组织中都发现了ILC2s,但它们的表达仍不到人类和小鼠白细胞总数的1%11,12。 通常,ILC2s和ILCs的存在频率低且缺乏特定的表面标记,以至于在鉴定,分离和进一步表征这些细胞时遇到了很多挑战。目前,普遍是使用多色流式细胞仪来分离ILC2s,但是这种分选方法耗时久,价格昂贵并且分离得到的细胞回收率低。为了应对这一挑战,STEMCELL Technologies开发了RosetteSep™和EasySep™细胞分选技术从人和小鼠组织中富集ILC2s细胞群(请参见第4页)。 ILC2s的预富集将减少细胞分选时间并提高纯度和回收率。接着可使用流式细胞仪对富集的ILC2s进行进一步的分析或分选。
鉴定人和小鼠ILC2s的设门策略
细胞预富集和抗体标记
传统的方法是通过流式细胞术对ILC2s进行分选或分析,首先要收集目标组织并使用合适的方法制备单细胞悬液。然后将整个样本用适当的荧光染料偶联抗体和活性染料标记。表1和表2分别展示了标记人和小鼠细胞的推荐抗体。请注意,人和小鼠ILC2s均被定义为谱系阴性(Lin-)细胞。为了更轻松地对-细胞群进行设门,请确保所有识别谱系标记的抗体都具有相同的荧光染料(例如FITC)。 后续还可以继续使用流式细胞仪对稀有ILC2s进行分析或分选。
由于ILC2s的含量较少,因此我们建议使用EasySep™或RosetteSep™ ILC2富集试剂盒(请参见第4页)进行预富集步骤,然后再用荧光染料偶联的抗体标记细胞。通过去除大量不需要的细胞并预富集ILC2s,您可以更快地处理样本,并改善流式细胞仪分离ILC2s的低回收率问题。
人血液中ILC2s的鉴定
图2显示了从未富集和富集的人全血样本中鉴定人ILC2s的设门策略。该设门策略也可用于分析从白细胞单采样本中得到的细胞(未显示) 按图2所示的设门策略,从SSC-A与FSC-A点图开始,并根据细胞颗粒度和细胞大小圈定一个包括所有白细胞的门。 或者,仅在淋巴细胞(未显示)周围圈定一个较小的门。 分离细胞时,使用FSC-W与FSC-H或SSC-W与SSC-H点图(未显示)去除双峰并在单个细胞上进行设门。 然后,选择活细胞,再选择CD45+细胞。 接下来,在Lin- CRTH2+(CD294)细胞群上圈定一个门。在该细胞群中,ILC2细胞群呈CD127和CD161阳性。
图2. 人血样中ILC2s的设门策略
如第4页所示,使用RosetteSep™人ILC2富集试剂盒(产品号 #15382)富集细胞。对于未富集的样本,使用密度梯度离心从人全外周血中分离细胞。富集的细胞中ILC2s(Lin-CD45+ CD294+CD127+ CD161+)的含量通常在0.44-53%(取决于供体)。本示例中,未富集和富集后细胞中ILC2s的含量分别为0.02%和12%。 使用FCS Express 5软件(De Novo软件)生成FACS图。
表1. 用于人ILC2s的流式细胞分析和细胞分选抗体
小鼠肺中ILC2s的鉴定
图3显示了从未富集和富集后小鼠肺来源的单细胞悬液中鉴定ILC2s的设门策略。该设门策略可应用于其他组织的细胞。但是,起始含量和细胞类型在不同组织之间会有所不同。因此,ILC2s可能会有不同的特征,且其图示可能与图3所示略有不同。从SSC-A与FSC-A点图开始,圈定一个包含所有白细胞的门。或者,仅在淋巴细胞周围圈定一个较小的门(未显示)。分离细胞时,使用FSC-W与FSC-H或SSC-W与SSC-H点图去除双峰并在单个细胞上进行设门操作。然后,选择活细胞和CD45+细胞。接下来,在Lin- ICOS+细胞群上创圈定一个门。在该细胞群中,ILC2细胞群呈CD90和ST2阳性。来自小鼠肺的ILC2s表达Lin-,CD45+,ICOS+,ST2+,CD90+。 ILC2s中转录因子GATA-3的表达也呈阳性。用于鉴定小鼠ILC2s的其他标记包括KLRG1,CD127和c-Kit3,4
已有数据显示小鼠鼻腔注射IL-33可以增加其肺中ILC2的含量12。为了熟悉ILC2的富集和分选,可以将IL-33处理过的肺用作阳性对照(图4)。
图3. 小鼠肺中ILC2s的设门策略
如第4页所示,使用EasySep™小鼠ILC2富集试剂盒 (产品号 #19842)富集来自C57Bl/6J小鼠肺组织的单细胞悬液,图左侧是未富集的单细胞悬液。富集的细胞中的ILC2含量(Lin-CD45+ICOS+ST2+)通常为2.2-7.1%。该示例中,未富集和富集细胞中ILC2s的百分比分别对应于CD45+细胞的0.8%和16.65%。使用FCS Express 5软件(De Novo软件)生成FACS图。
图4. 来自Naive 和IL-33处理的小鼠肺中的ILC2s
如前所述,从naïve或经IL-33处理的C57Bl/6J小鼠肺中分离ILC2s13。合并多个肺(未富集的样本),然后使用EasySep™小鼠ILC2富集试剂盒(产品号 #19842)富集一部分的合并样本。
表2. 用于小鼠中ILC2s的流式细胞分析和细胞分选的抗体
分选前进行ILC2预富集的优势
- 使用EasySep™或RosetteSep™富集细胞,无需分离柱。
- 缩短分离细胞的时间。
- 提高ILC2s的纯度和得率。
EasySep™操作步骤
- 将EasySep™富集抗体混合物添加到单细胞悬液中。
- 将EasySep™磁珠添加到细胞悬液中。
- 将流式管放入EasySep™磁极中3分钟。*
- 将目的细胞倒入新的试管中。 重复步骤3和4。
富集的ILC2s可用抗体标记。
*所示时间是使用EasySep™紫色磁极的操作时间。时间会因具体试剂盒和所使用的磁极而有所不同。
RosetteSep™ Protocol
- 添加RosetteSep™富集抗体混合物。
- 加入到密度梯度离心液面上。
- 离心20分钟。‡*
- 洗涤并收集细胞。
*所示时间是使用RosetteSep™人ILC2富集试剂盒的操作时间。
**使用SepMate™可以在开启离心机刹车的情况下将离心时间缩短到10分钟。
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