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适用于人胚胎干细胞 (Human ES Cell) 和诱导性多能干细胞 (Human iPS Cell) 的重编程、维持和分化的无饲养层培养基。

TeSR™ 系列无饲养层培养基采用严格筛选的材料生产,确保每批次之间具有最高的一致性和实验可重复性,从而帮助您减少研究中的变异。每款培养基都基于James Thomson实验室已发表的配方1-3,可以使研究人员维持高质量的人多能干细胞(hPSC)培养系统。这些产品提供了一个连续的TeSR™培养基工作流程,涵盖了从诱导性多能干细胞(iPS)细胞的生成,到胚胎干细胞(ES)和iPS细胞的维持、分化和冻存。

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为什么使用 mTeSR™ 和 TeSR™ 培养基系列?

  • 无饲养层的 hPSC 培养通过减少不确定成分和免疫原性材料的存在,最小化变异性。
  • mTeSR™出版最广泛发布的 hPSC 培养基,已有超过 1500 篇同行评审的文献。
  • 每种培养基中的相同基础配方使得建立一个基于 TeSR™ 培养基的连续工作流程成为可能。

选择您的 TeSR™ 维持培养基

使用交互式产品筛选器信息图,选择最符合您需求的 TeSR™hPSC 培养基。

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hPSC 维持与扩增培养基

eTeSR™

配方:

无血清

应用:

无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增,优化用于单细胞传代。

特性/优势:

  • 加强缓冲体系、更稳定的FGF2, 代谢物优化,在支持细胞质量的同时允许更灵活的换液方案。
  • 在常规单细胞传代过程中,提高hPSC培养的遗传稳定性。
  • 增加细胞得率,同时减少与单细胞传代或高密度培养的相关的压力。
  • 消除自发性分化。

mTeSR™ Plus

配方:

无血清

应用:

无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。

特性/优势:

  • 加强缓冲体系,使用了更稳定的FGF2,在支持细胞质量的同时允许灵活的换液方案。
  • 更好的细胞培养形态和细胞生长特征。
  • 与CloneR™联用时提高单细胞存活率。
  • 与已建立的基因组编辑和分化方案完全兼容。
  • 符合相关cGMP标准生产,实现从基础研究到药物及细胞治疗开发之间无缝衔接。

TeSR™-AOF

配方:

无血清、无动物源成分

应用:

无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。

特性/优势:

  • 选择二级无动物源成分生产的培养基,从而降低原料风险。
  • 支持高质量的克隆形态、牢固的附着和稳健的细胞扩增。
  • 成分稳定,包括 FGF2,在支持高细胞质量的同时,允许灵活的换液方案。

mTeSR™1

配方:

无血清

应用:

无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。

特性/优势:

  • 已在60多个国家用于维持数千株人ES和iPS细胞系,超过10年。
  • 含有预筛选的牛血清白蛋白(BSA),可稳定培养基、促进脂质/营养运输,并保护细胞培养免受毒素和应激伤害。
  • 众多已发表hPSCs谱系特异性分化方案的首选维持培养基。

mTeSR Without Phenol Red

配方:

无血清

应用:

无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。

特性/优势:

  • 已在60多个国家用于维持数千株人ES和iPS细胞系,超过10年。
  • 含有预筛选的牛血清白蛋白(BSA),可稳定培养基、促进脂质/营养运输,并保护细胞培养免受毒素和应激伤害。
  • 众多已发表hPSCs谱系特异性分化方案的首选维持培养基。

TeSR™-E8™

配方:

无动物成分;无血清

应用:

无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。

特性/优势:

  • 最前沿的无动物源成分(Animal component-free,ACF)的配方。
  • 仅包含维持人多能干细胞(hPSC)所需的8种最关键成分。

RSeT™ Feeder-Free Medium

配方:

无血清

应用:

将激发态的人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)回转为类原始态的状态,并在低氧条件下维持其类原始态的状态。

特性/优势:

  • 无饲养层依赖的培养系统,可减少固有变异性、成本及饲养层制备的负担。
  • 无血清配方,包含预筛选的高质量成分,确保结果的可重复性。
  • 有效促进高效率地回转为类原始态的状态,具有稳定的圆顶状(domed)形态、原始态基因表达谱,以及低水平的自发性分化,无需外源基因。
  • 无需添加bFGF,即可维持类原始态多能性性。
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cGMP级人多能干细胞(hPSC)维持培养基

在进行 hPSC 研究时,着眼于临床应用。我们稳定的无饲养层 hPSC 维持培养基 mTeSR™+,现已按照相关 cGMP(现行药品生产质量管理规范) 要求,在经过认证的质量管理体系下进行生产和检测。如需了解更多关于法规合规的信息,请访问 STEMCELL 官网


mTeSR™Plus 与其他维持培养基有何不同?

mTeSR™ Plus 是在 mTeSR™1 配方基础上设计的升级版本。该版本包含更稳定的成分(包括 FGF2),与其他培养基不同,它具备增强的缓冲能力,可减少培养基的酸化,从而在隔天换液操作时仍能保持细胞质量。

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优势:

  • 增强的缓冲系统和稳定的FGF2有助于在更灵活的换液方案下维持细胞质量。
  • 支持更优的培养形态和细胞生长特性。
  • 搭配 CloneR™ 使用时,可显著提高单细胞存活率。
  • 与现有的基因组编辑和分化方案完全兼容。
  • 按照相关cGMP规范生产,实现从基础研究到药物和细胞治疗开发的无缝过渡。

了解更多关于mTeSR™ Plus的信息,并在您自己的实验室中试用。

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hPSC 分化培养基

TeSR™-E5

配方:

无血清;Xeno-Free

应用:

用于人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)的分化。

特性/优势:

  • 基于TeSR™-E8™,但不含bFGF, TGFβ 和胰岛素
  • 非常适合用于分化为某些谱系的研究,例如心肌细胞,因为胰岛素已知会抑制该过程。

TeSR™-E6

配方:

无血清、无异源成分(Xeno-Free)

应用:

用于人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)的分化。

特性/优势:

  • 基于TeSR™-E8™,但不含 bFGF 和 TGFβ。
  • 中性谱系基础配方,非常适合分化、筛选和其他应用。
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胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)的稳定分化具有一定挑战性。我们推荐使用我们的 STEMdiff™ 产品系列,以实现最佳且可重复的分化效果。


hPSC冷冻保存介质

CryoStor® CS10

配方:

符合cGMP标准生产、无动物成分、无血清

应用:

用于人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)的冷冻保存

特性/优势:

  • 无动物成分。
  • 在长期保存后可维持较高的细胞活力,并最大限度提高细胞恢复效果。

mFreSR™

配方:

无血清

应用:

用于人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)的冷冻保存

特性/优势:

  • 针对人多能干细胞(hPSCs)以聚集体形式保存进行了优化。
  • 解冻效率高于传统含血清培养基的所报道的水平。

FreSR™-S

配方:

无动物成分;无血清

应用:

用于人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)单细胞状态下的冷冻保存。

特性/优势:

  • 无动物成分
  • 针对单细胞悬液状态的细胞冷冻保存进行了优化。
  • 解冻效率高于传统含血清培养基的所报道的水平。
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iPS细胞重编程培养基与试剂盒

ReproTeSR™ 重编程培养基

配方:

无血清、无异源成分(Xeno-Free)

应用:

用于从成纤维细胞、尿源性细胞以及血液来源细胞(如 CD34⁺ 或红系祖细胞)中生成人诱导多能干细胞(iPS)

特性/优势:

  • 成分明确的无饲养层配方,有助于高效、可重复地生成人 iPS 细胞。
  • 快速生高质量的具有典型 iPS 细胞形态的大克隆,便于识别与亚克隆操作,从而轻松建立 iPS 细胞系。
  • 可无缝整合至 STEMCELL 的相关产品体系中,适用于重编程前的细胞准备以及 iPS 细胞生成后的维持与分化。

TeSR™-E7™ 重编程培养基

配方:

无血清;无异源成分(Xeno-Free);无动物成分

应用:

在无饲养细胞的条件下生成人诱导多能干细胞(iPS)

特性/优势:

  • 预筛选的组分确保形成高质量的 iPS 细胞克隆形态,便于识别和手动挑选克隆。
  • 降低分化和成纤维细胞的生长,有助于快速建立均一的 iPS 细胞培养体系。
  • 无饲养层、成分明确的配方,有助于高效、可重复地生成人 iPS 细胞。

红系祖细胞重编程试剂盒

配方:

无动物成分;无血清

应用:

从外周血中分离并扩增红系祖细胞,并将其进一步重编程为诱导多能干细胞(iPS)。

特性/优势:

  • 针对从外周血样本扩增的红系祖细胞的富集、扩增及重编程进行了优化。
  • 与传统hES细胞培养基相比,具有更高的重编程效率和更高的 iPS 细胞克隆形成率。
  • 快速生成高质量的具有典型 iPS 细胞形态的大克隆,有助于识别与亚克隆操作。
  • 可与TeSR™和 STEMdiff™ 产品无缝衔接,用于iPS细胞系的后续维持与分化。

CD34+祖细胞重编程试剂盒

配方:

无血清

应用:

从外周血中分离并扩增CD34+祖细胞,并将其进一步重编程为诱导多能干细胞(iPS)。

特性/优势:

  • 针对从外周血样本扩增的CD34+祖细胞的富集、扩增及重编程进行了优化。
  • 与传统hES细胞培养基相比,具有更高的重编程效率和更高的 iPS 细胞克隆形成率。快速生成高质量的具有典型 iPS 细胞形态的大克隆,有助于识别与亚克隆操作。
  • 可与 TeSR™ 和 STEMdiff™ 产品无缝衔接,用于iPS细胞系的后续维持与分化。

ReproRNA™-OKSGM

应用:

将成体细胞(如成纤维细胞)重编程为诱导多能干细胞细胞(iPS)。

特性/优势:

  • 非病毒、非整合载体系统。
  • 自我复制型载体,仅需单次转染。
  • 载体包含所有重编程因子。
  • 成纤维细胞的重编程效率与Sendai病毒相当。
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hPSC 悬浮放大培养基

mTeSR™3D

配方:

无血清

应用:

用于在3D悬浮培养中以细胞团形式扩增和放大未分化的人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)。

特性/优势:

  • 基于mTeSR™配方,专为人多能干细胞(hPSC)大规模扩增设计。
  • 采用分批补料(Fed-batch)培养系统,简化工作流程。在2–3 周内可扩增至 10⁹ 数量级的高质量、未分化的人多能干细胞。

TeSR™-E8™3D

配方:

无动物成分

应用:

用于在3D悬浮培养中以细胞团形式扩增和放大未分化的人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)。

特性/优势:

  • 基于TeSR™-E8™配方,配方经过优化,适用于无动物成份,低蛋白条件下hPSC大规模悬浮培养,ACF条件。
  • 采用分批补料(Fed-batch)培养系统,简化操作流程。在2–3 周内可扩增至 10⁹数量级的高质量、未分化的人多能干细胞。

TeSR™ AOF 3D

配方:

无动物源成分(Animal Origin-Free)

应用:

用于在3D悬浮培养中以细胞团形式扩增和放大未分化的人胚胎干细胞(ES)和诱导多能干细胞(iPS)。

特性/优势:

  • 基于TeSR™-AOF配方,适用于在整个生产流程中(包括二级原材料)完全不使用动物源成分的 hPSC 扩增。
  • 采用分批补料(Fed-batch)培养系统,简化操作流程。
  • 在2–3 周内可扩增至 10⁹数量级的高质量、未分化的人多能干细胞。
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TeSR™培养基中细胞因子的作用及其对hPSC培养的影响是什么?

  • 促进细胞存活与增殖,同时抑制特定谱系(如心肌细胞)的分化该成分,存在于所有TeSR™培养基中(TeSR™-E5除外)。
  • 是维持hPSC自我更新和扩增的关键细胞因子,存在于TeSR™重编程培养基(ReproTeSR™、TeSR™-E7™)及维持培养基(,,)中
  • 会抑制重编程过程,对维持hPSC多能性至关重要。TGFβ存在于全部三种TeSR™维持培养基(,,)中。

品牌历史

2006年,威斯康星大学James Thomson实验室的Tenneille Ludwig博士及其同事首次报道了在成分完全确定、无饲养层培养条件下建立的胚胎干细胞系1,2。这种首个成分明确的培养基显著改进了人胚胎干细胞培养体系,并以mTeSR™1商品名上市,成为发表文献最多无饲料培养基,被1100余篇同行评审论文引用。

随后,基于相同配方的无外源动物成分(xeno-free)培养基——TeSR™2 推出。

2012年,发布了名为 TeSR™-E8™ 的低蛋白维持培养基,该配方基于James Thomson实验室陈国凯博士发表的E8配方3开发,仅包含维持hPSC所需的核心成分,为hPSC维持培养提供了更简化的培养方案。

近年来,STEMCELL Technologies公司进一步推出mTeSR™ Plus(2019年)和TeSR™-AOF(无动物源成分,2021年)。作为无饲养层维持培养基,mTeSR™ Plus是一种改进的无饲养层维持培养基,增强了 pH 缓冲能力,支持无需周末换液的培养方案。TeSR™-AOF是一种无动物源成分(Animal Origin-Free)培养基,生产全过程(包括二级原材料)中无动物源成分为用户提供病毒安全问题保证。mTeSR™ Plus、TeSR™-AOF和mTeSR™1均遵循现行cGMP规范生产。

除 TeSR™ 维持培养基外,STEMCELL Technologies还开发了支持多能干细胞研究各阶段的 TeSR™ 系列产品包括:成纤维细胞重编程优化培养基(TeSR™-E7™)、血细胞与成纤维细胞重编程培养基(ReproTeSR™)、分化培养基(TeSR™-E6和TeSR™-E5)以及冻存液(mFreSR™和FreSR™-S)


科研资源

多能干细胞质量控制

了解hPSC培养的关键质量属性,包括维持与评估基因组稳定性、多能性和细胞形态学的关键技术。

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专家研讨:hPSC质量保障的挑战

聆听全球专家的见解,探讨影响人多能干细胞应用的关键问题。本系列网络研讨会由 STEMCELL Technologies 与 Nature Research 合作推出。

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在我们的多能干细胞资源中心细胞培养方法库中,探索更多有助于您的hPSC研究的实用资源


应用

使用人 iPS 细胞进行毒性测试

Jagtap S, Meganathan K, Gaspar J, Wagh V, Winkler J, Hescheler J和Sachinidis A (2011);阿拉伯糖胞嘧啶在人胚胎干细胞多系分化过程中诱导外胚层并抑制中胚层表达[J]。第162卷,第1743-56页。
Kleinstreuer NC, Smith AM, West PR, Conard KR, Fontaine BR, weirhauptman AM, Palmer JA, Knudsen TB, Dix DJ, Donley ELR和Cezar GG (2011),利用人类胚胎干细胞和代谢组学鉴定一组毒素化学物质的发育毒性途径,毒理学与应用药理学。2011年11月。卷257(1),第111-121页。
梁鹏,兰芳,李AS,龚涛,Sanchez-Freire V,王勇,Diecke S, salam K, Knowles JW,王鹏军,Nguyen PK, Bers DM, Robbins RC,吴锦江(2013)。利用人类诱导多能干细胞衍生的心肌细胞文库进行药物筛选,揭示了疾病特异性的心脏毒性模式。循环。, 2013年4月。第127卷(16),第1677-1691页。
刘健,孙宁,布鲁斯·马,吴锦江,Butte MJ(2012)。多能干细胞衍生心肌细胞的原子力力学生物学, PLoS ONE。, 2012年5月。第7卷(5),页e37559。
梅塔A,钟云英,吴安,Iskandar F, Atan S,魏辉,Dusting G,孙伟,黄平,沈伟(2011),无病毒诱导多能干细胞衍生的人心肌细胞的药理学反应心血管研究。, 2011年9月。第91卷(4),第577-586页。

向造血细胞分化

Brown ME, Rondon E, Rajesh D, Mack A, Lewis R, Feng X, Zitur LJ, leish RD和Nuwaysir EF (2010),从人外周血T淋巴细胞中提取诱导多能干细胞, PLoS One。第5卷,第11373页。
Carpenter L, Malladi R, Yang C-T, French A, Pilkington KJ, Forsey RW, Sloane-Stanley J, Silk KM, Davies TJ, Fairchild PJ, Enver T和Watt SM (2011)人诱导多能干细胞具有b细胞淋巴生成能力、血液。2011年4月。117卷(15),第4008-4011页。
Dravid G, Zhu Y, Scholes J, Evseenko D and Crooks GM (2011),人胚胎干细胞造血分化过程中基因表达异常摩尔。第19卷,第768-81页。
Niwa A, Heike T,梅田K,大岛K,加藤I,酒井H, Suemori H,中畑T,斋藤MK (2011),通过中胚层祖细胞培养人多能细胞有序造血分化的新型无血清单层培养, PLoS One。第6卷,第22261页。
刘建军,刘建军,刘建军,刘建军,刘建军(2011);从hESCs和hiPSCs中生成体外造血祖细胞和分化血细胞的明确、无饲料、无血清系统, PLoS ONE。2011年3月。第6卷(3),第17829页。

向定向内胚层分化

Hannoun Z, Fletcher J, Greenhough S, Medine C, Samuel K, Sharma R, Pryde A, Black JR, Ross JA, Wilmut I, Iredale JP and Hay DC (2010);条件培养基与无血清培养基在人胚胎干细胞培养与分化中的比较,细胞重编程。第12卷,133-40页。
Jaramillo M和Banerjee I (2012);内皮细胞共培养介导人胚胎干细胞向胰腺胰岛素生成细胞的定向分化成熟可视化实验杂志。2012年3月。(61)
Miki T, Ring A和Gerlach J (2011),三维动态灌注培养条件促进人胚胎干细胞肝脏分化组织工程C部分方法。第17卷,557-68页。
Mou H, Zhao R, Sherwood R, Ahfeldt T, Lapey A, Wain J, Sicilian L, Izvolsky K, Lau FH, Musunuru K, Cowan C, Rajagopal J (2012);从小鼠ESCs和患者特异性囊性纤维化iPSCs中生成多能肺和气道祖细胞,细胞干细胞。2012年4月。第10卷(4),385-397页。
Spence JR, Mayhew CN, Rankin SA, Kuhar MF, valance JE, Tolle K, Hoskins EE, Kalinichenko VV, Wells SI, Zorn AM, Shroyer NF and Wells JM (2011);人多能干细胞体外定向分化肠组织的研究、自然。2011年2月。第470卷(7332),105-109页。

规模化扩增与生物反应器培养

Krawetz R, Taiani JT, Liu S, b孟G, Li X, Kallos MS and Rancourt DE (2010);多能性人胚胎干细胞在搅拌悬浮生物反应器中的大规模扩增组织工程C部分:方法。, 2010年8月。第16卷(4),第573-582页。
吴志伟、陈爱康、莫燕、陈晓、林佑明、陈安、周宝华及reveny S (2009),人胚胎干细胞的长期微载体悬浮培养干细胞研究。, 2009年5月。第2卷(3),第219-230页。
Olmer R, Haase A, Merkert S, Cui W, Palecek J, Ran C, Kirschning A, Scheper T, Glage S, Miller K, Curnow EC, Hayes ES和Martin U(2010)。未分化的人iPS细胞和胚胎干细胞在悬浮培养中的长期扩增干细胞研究,第5卷,第51-64页。
Singh H, Mok P, Balakrishnan T, Rahmat SN and Zweigerdt R (2010);扩大单细胞接种人胚胎干细胞的悬浮培养《干细胞》,第4卷,第165-79页。
Zweigerdt R, Olmer R, Singh H, Haverich A and Martin U (2011);人多能干细胞在悬浮培养中的规模化扩增《自然协议》。第6卷(5),689-700页。

向心肌细胞分化

Elliott DA, Braam SR, Koutsis K, Ng ES, Jenny R, Lagerqvist EL, Biben C, Hatzistavrou T, Hirst CE, Yu QC, Skelton RJ, Ward-van oostard D, Lim SM, Khammy O, Li X, Hawes SM, Davis RP, Goulburn AL, Passier R, Prall OW, Haynes JM, Pouton CW, Kaye DM, mumny CL, Elefanty AG和Stanley EG (2011),NKX2-5(eGFP/w) hESCs用于分离人心脏祖细胞和心肌细胞Nat方法。第8卷,第1037-40页。
Hazeltine LB, Simmons CS, Salick MR, Lian X, Badur MG, Han W, Delgado SM, Wakatsuki T, Crone WC, Pruitt BL和Palecek SP (2012);底物力学对人多能干细胞生成心肌细胞收缩性的影响,国际细胞生物学杂志。Vol. 2012, pp. 1-13。
李欣,肖超,Wilson G,朱凯,Hazeltine LB, Azarin SM, Raval KK,张杰,Kamp TJ, Palecek SP (2012);通过规范Wnt信号的时间调节,人类多能干细胞向心肌细胞的强大分化,美国国家科学院院刊。2012年7月。第109卷(27),10759-10760页。
梅塔A,钟云英,吴安,Iskandar F, Atan S,魏辉,Dusting G,孙伟,黄平,沈伟(2011),无病毒诱导多能干细胞衍生的人心肌细胞的药理学反应心血管研究。, 2011年9月。第91卷(4),第577-586页。
张辉,邹斌,于辉,Moretti A,王旭,闫伟,Babcock JJ, Bellin M, McManus OB, Tomaselli G, Nan F, Laugwitz K-L, Li M(2012)。调节hERG钾通道门控可使KCNQ1钾通道功能失调导致的动作电位持续时间延长正常化,美国国家科学院院刊。2012年7月。第109卷(29),11866-11871页。

参考文献

  1. Ludwig et al.(2006)人胚胎干细胞的非饲养培养。Nat Methods 3(8): 637-46。
  2. Ludwig et al.(2006)人类胚胎干细胞在特定条件下的衍生。生物医学工程学报,24(2):185-7。
  3. Chen G et al.(2011)化学定义的人类iPSC衍生和培养条件。Nat Methods 8(5): 424-9。
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